
RNA-seq 分析的重要性RNA-seq 实验,以避免批次效应了解 RNA 提取和 RNA-seq 文库制备实验过程中的步骤,有助于设计 RNA-seq 实验,但有一些特殊的注意事项需要明确:
实验重复可以通过技术重复或生物学重复来实现,如下图:
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使用相同的生物样本重复实验步骤,以准确测量技术差异并在分析过程中将其去除。
使用相同条件下的不同生物样本来衡量样本间的差异。
在微阵列时代,技术重复被认为是必要的;然而,当前的 RNA-seq 技术,技术差异远低于生物差异,因此不需要技术重复。相反,生物重复对于差异表达分析是绝对必要的。
对于差异表达分析,生物学重复越多,对生物学变异的估计就越好,我们对平均表达水平的估计也就越精确。因此,数据可以进行更准确的建模并识别更多差异表达的基因。
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如上图所示,生物重复比测序深度更重要,测序深度是每个样本测序的读数总数。该图显示了测序深度和重复次数对鉴定出的差异表达基因数的关系。与增加测序深度相比,重复次数的增加往往会得到更多的差异表达基因。因此,通常更多的重复比更高的测序深度更好,但需要注意的是,检测低表达的差异表达基因和执行异构体水平(可变剪切)的差异表达分析需要更高的深度。
下面列出了一些关于重复和测序深度的建议,用于实验规划:
reads。reads 通常就足够了。reads ,具体取决于表达水平。reads)。RNA 质量进行质控。RNA 分析(内含子保留、small RNA-Seq 等):总之,尽量做生物学重复。
Confounding 是指:无法区分结果是由什么原因导致的。
例如,我们知道性别对基因表达有很大影响,如果我们所有的对照组小鼠都是雌性而所有处理组小鼠都是雄性,那么我们的治疗效果就会被性别混淆。我们无法区分是处理的作用和性别的作用。


批次效应是 RNA-seq 分析的一个重要问题,仅由批次效应就能导致显著的表达差异。
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RNA 提取都是在同一天进行的?RNA 提取与文库制备?RNA 提取与文库制备?如果任何一个答案是“否”,那么就存在批次效应。
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