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单细胞RNA测序揭示了胶质母细胞瘤进展过程中免疫景观的演化

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生信技能树jimmy
发布2024-03-22 09:44:20
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发布2024-03-22 09:44:20
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文章被收录于专栏:单细胞天地单细胞天地

基本信息

题目:Single-cell RNA sequencing reveals evolution of immune landscape during glioblastoma progression 期刊:Nature Immunology 发表时间:2022 单位:Department of Medicine, Beth Israel Deaconess Medical Center, Harvard Medical School, Boston, MA, USA 组织类型:de novo GBM mouse model2–4 wherein tumors are initi ated in situ from conditional (Cre/Lox) overexpression of human EGFR combined with loss of Cdkn2a and Pten. 组学:scRNA, FASC 测序平台:InDrop 样本数:4 细胞数:CD45- (27,633), CD45+ (36304) 数据下载:GSE195848, GSE196174, GSE196175, GSE195813

背景知识

该研究通过运用scRNA测序技术,深入探索了胶质母细胞瘤(GBM)发展过程中的免疫微环境。在这种无法治愈的原发性恶性脑癌中,发现了大量的促肿瘤免疫成分。研究表明,在GBM的发展早期,存在一种促炎症的小胶质细胞亚群。然而,在肿瘤晚期,发现抗炎免疫细胞和促肿瘤的骨髓来源的抑制细胞MDSC的出现。这种演变过程与血脑屏障的破坏以及表皮生长因子受体阳性GBM细胞的广泛增长有着相似的特征。在低级别胶质瘤和GBM的患者活检样本中,也发现了微胶质细胞和巨噬细胞之间的类似关系。此外,本文研究了标准治疗方法特莫唑胺和放疗对小鼠GBM免疫组成的影响。结果显示,特莫唑胺能够降低骨髓来源的抑制细胞的积累,而同时给予特莫唑胺和辐射治疗则会增加肿瘤内的GranzymeB+ CD8+T细胞,但也会增加CD4+调节性T细胞的数量。

总的来说,该研究展示了免疫细胞在GBM发展过程中的演变景观,特莫唑胺对GBM的免疫细胞组成有显著影响,这为GBM的治疗策略提供了重要的线索。

主要内容

图1 scRNA-seq 鉴定了GBM中的CD45–和CD45+细胞群。

(a) 代表性的GBM发展随时间的MRI,附带BLI输出。

(b) MRI-BLI,数据以生物独立重复的均值±标准差呈现。

(c) 正常和GBM小鼠的脑CD45–(n=27,633)和CD45+(n=36,304)细胞的UMAP图,展示主要的细胞类型和亚型。

(d) Ptprc(CD45)在CD45–和CD45+ UMAP上的表达。

(e) 人类EGFR基因(EGFR)和iCre重组酶(e)转录本在CD45–和CD45+ UMAP上的表达。

(f) 来自所示EGFR+ GBM细胞群的细胞表达G1、G2M和S期标记的百分比。

(g) CD45–和CD45+细胞的top基因的热图。

图2 GBM由转录上存在差异的EGFR+癌细胞群组成。

(a) EGFR+细胞群在Cre病毒注射后的7、14和21天的面积。

(b) >30天晚期GBM的五彩斑点切片。比例尺,左侧面板100μm,右侧面板500μm。NB,正常脑。

(c) 小鼠中早期(10天)和晚期(>30天)Cre病毒注射后的荧光细胞(A和B)或细胞群(C和D)。

(d) EGFR+细胞群上的Monocle3轨迹推断。

(e) EGFR+细胞群0和5之间的差异表达基因(DEGs)。

(f) EGFR配体Hbegf和Tgfa在UMAP上的表达。

(g) Lgals1(GAL1)和Pdgfra在UMAP上的表达。

(h) hsEGFR+PDGFRA+和hsEGFR+GAL1+流式分选细胞的批量RNAseq的差异表达基因的热图。

(i) hsEGFR+PDGFRA+和hsEGFR+GAL1+流式分选细胞的批量RNAseq的差异表达基因的火山图。

(j) hsEGFR+PDGFRA+和hsEGFR+GAL1+细胞群中上调基因的Reactome分析。

图3 EGFR GBM中存在增殖性小胶质细胞。

(a) 小胶质细胞群2、4和19中细胞周期基因的表达。

(b) EdU流式图和小胶质细胞的定量。分别对应于7、14和21天的n=7、4和3。

(c) GBM小胶质细胞的增殖指数随时间变化。Ki67阳性微胶质细胞占总微胶质细胞的百分比。数据以生物独立重复的均值±标准差呈现,对照组脑天0 n=3,GBM和对侧n=7、4和3,分别对应于10-15、20-25和>30天。

(d) GBM进展过程中小胶质细胞含量的增加,以活细胞百分比表示。数据以生物独立重复的均值±标准差呈现。对照组脑天0 n=5,GBM n=8、7和5,对侧n=8、5和5,分别对应于10-15、20-25和>30天。统计分析,相对于对照组脑小胶质细胞(天0)。

(e) EdU+和EdU–流式分选微胶质细胞的差异表达基因的热图。

(f) 流式分选小胶质细胞(EdU+、EdU–)、巨噬细胞和对侧微胶质细胞的转录组的Spearman相关性与指示的RNAseq数据集的相关性。

(g) EdU+和EdU–流式分选小胶质细胞群之间的差异表达基因和GO分析。

(h) 流式分选正常脑小胶质细胞和携带GBM的对侧微胶质细胞之间的差异表达基因和GO分析。

(i) 小胶质细胞群2和4之间以及群2和19之间的差异表达基因。

(j) 小胶质细胞群上的Monocle3轨迹推断。

(k) EdU+和EdU–小胶质细胞群的Reactome分析。

图4 GBM中细胞因子、检查点受体及其配体主要在CD45+区域中表达。

(a) 来自GBM流式分选的CD45+和CD45–细胞的细胞周期基因的RT-PCR log2FC。数据以生物独立肿瘤的均值±标准差呈现,n=3。

(b) 来自CD45–和CD45+ scRNA-seq数据集的指示细胞因子及其受体的标度表达。

(c) UMAP图展示Tnf的表达量。

(d) GBM肿瘤的流式细胞术中TNF平均荧光强度(MFI)表达。数据以生物独立肿瘤的均值±标准差呈现,n=3,5和5,分别对应于正常脑小胶质细胞、肿瘤相关小胶质细胞和巨噬细胞。

(e) UMAP图展示Cxl12和Cxcr4的表达量。

(f) 来自CD45–和CD45+ scRNA-seq数据集的指示检查点受体和配体的表达。

(g) Cd274(PD-L1)、Pdcd1lg2(PD-L2)和Pdcd1(PD-1)基因的表达。

图5 免疫细胞浸润的动态变化

(a) 正常脑、早期和晚期GBM的UMAP图,展示重要的细胞类型及细胞亚型。

(b、c) 来自scRNA-seq数据和用于scRNA-seq的GBM样本的EGFR+(b)和细胞类型(c)的相对数量。

(d) 来自scRNA-seq的小胶质细胞和巨噬细胞的组成。

(e) GBM中EGFR+和CD45+细胞的流式细胞筛选。

(f) 指示GBM细胞类型的流式细胞筛选。

(g、h) 寡突细胞群9和12的拟时间轨迹(root聚类12)(g)和差异表达基因(h)。

(i、j) GBM BBB完整性评估。GBM脑部EB和NaF给药后的代表性光镜照片和定量(i)。数据以生物独立重复的均值±标准误呈现。EB,n=3、5、4、5和4,分别对应于天0、10、20、25和30+,NaF,n=2、5、4和3,分别对应于天0、10、20和30+。

图6 随时间推移,巨噬细胞和小胶质细胞逐渐丧失促炎特性

(a) 早期与正常和晚期GBM肿瘤之间小胶质细胞群2和4的差异表达基因的火山图。

(b) 晚期与早期GBM肿瘤中DC群1、中性粒细胞/PMN-MDSCs群11和巨噬细胞群6和20的差异表达基因的火山图。

(c) 细胞因子配体:受体对分析。正常、早期和晚期GBM样本中指示细胞类型群的配体和受体的表达水平绘制。

(d) 来自GSEA的指示小胶质细胞和巨噬细胞群的标准化富集分数(NES),用于分析具有促炎性“M1”极化, 和抗炎、促肿瘤的“M2”极化。

图7 TMZ和放射改变GBM免疫微环境并延长生存。

(a) 对照组非GBM携带小鼠和早期GBM小鼠的BM和脾脏的流式细胞筛选,指示的细胞类型和祖细胞。

(b) 与a中相同的脾脏细胞的流式细胞筛选,指示的细胞标记物和检查点分子。

(c) GBM小鼠用对照药物或每日25或66.7 mg kg−1 TMZ治疗的Kaplan-Meier生存分析。TMZ 66.7 g kg−1相对于对照组*P<0.0001,NS,不显著,log-rank(Mantel-Cox)。数据来自生物独立重复,对照组,25和66.7 mg kg−1 TMZ分别为13、6和7。

(d) 对照组和TMZ治疗(25 mg kg−1或66.7 mg kg−1每日)小鼠的GBM中指示细胞类型的流式细胞筛选。对照组和TMZ治疗的比较。数据以生物独立重复的均值±标准误呈现,对照组,25.0和66.7 mg kg−1 TMZ分别为5、3和5

(e) 用对照药物、25 mg kg−1 TMZ、IR和IR/TMZ治疗的GBM小鼠的Kaplan-Meier生存分析。数据表示生物独立重复,对照组,25 mg kg−1 TMZ,IR和IR/TMZ分别为13、6、4和5,*P<0.0001,log-rank(Mantel-Cox)。

(f) 对照组和TMZ(25 mg kg−1),IR(2 Gy/day)和IR/TMZ治疗的GBM小鼠的指示细胞类型的流式细胞筛选。

图8 低级别胶质瘤和GBM患者的免疫异质性。

(a) 低级别和GBM患者肿瘤样本中细胞类型的流式细胞筛选比例。

(b) 与a中的肿瘤相同的Tregs、CD4+T和CD8+T的流式细胞筛选比例,

(c) 低级别和GBM肿瘤中CD11b+细胞的百分比, 以及IDH1 R132H突变体和IDH1野生型胶质瘤的流式细胞筛选比例

(d) 在低级别和GBM中,单核细胞和巨噬细胞被合并,对于Tregs、CD4+和CD8+淋巴细胞,低级别、GBM、IDH1 R132H突变体和IDH1野生型胶质瘤。

低级别和GBM分别为5和8。

小结

总之,该研究提供了一个全面且无偏见的视角,展示了免疫细胞在GBM发展过程中的演变景观,这对于未来GBM的治疗干预具有重要的参考价值,为未来的治疗策略提供了新的思路。

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  • 基本信息
  • 背景知识
  • 主要内容
    • 图1 scRNA-seq 鉴定了GBM中的CD45–和CD45+细胞群。
      • 图2 GBM由转录上存在差异的EGFR+癌细胞群组成。
        • 图3 EGFR GBM中存在增殖性小胶质细胞。
          • 图4 GBM中细胞因子、检查点受体及其配体主要在CD45+区域中表达。
            • 图5 免疫细胞浸润的动态变化
              • 图6 随时间推移,巨噬细胞和小胶质细胞逐渐丧失促炎特性
                • 图7 TMZ和放射改变GBM免疫微环境并延长生存。
                  • 图8 低级别胶质瘤和GBM患者的免疫异质性。
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