原理
NO(Nitric Oxide,NO)广泛分布于生物体内神经、循环、呼吸、消化、泌尿生殖等系统中,特别是神经组织中较丰富。它作为细胞间及细胞内的信息物质,发挥信号传递的作用,是一种新型的生物信使分子,在机体的生理、病理过程中起着重要的作用。NO易被氧化成亚硝酸盐和硝酸盐,因此,通常要测定亚硝酸盐和硝酸盐的总量来推算出总的一氧化氮的量。CheKine 一氧化氮(NO)含量检测试剂盒(微量法),采用改进的格里斯法将硝酸盐还原为亚硝酸盐后,即可准确测定NO的生成量。格里斯分析的机理概括为重氮类之间的偶氮耦合,重氮类是由磺胺和 NO2-和 N-(1-萘基)乙二胺二盐酸盐产生的,产生与 NO代谢物成正比的比色(540 nm)产物。
自备耗材
·酶标仪或可见光分光光度计(能测540 nm处的吸光值)
·恒温培养箱
·96孔板或微量玻璃比色皿、可调节式移液枪及枪头
·去离子水、PBS (pH 7.4)
·匀浆器(如果是组织样本)
试剂准备
NaNO2 Standard (1 M): 使用前平衡到室温;实验过程中避光放置;分装避光保存于-20℃。
Griess Reagent I:即用型;使用前平衡到室温;实验过程中避光放置;4℃避光保存。
Griess ReagentⅡ:即用型;使用前平衡到室温;实验过程中避光放置;4℃避光保存。
VCl3 Reagent:即用型;使用前平衡到室温;实验过程中避光放置;4℃避光保存。
ZnSO4:即用型;使用前平衡到室温;实验过程中避光放置;4℃避光保存。
标准曲线设置:取10 µL NaNO2 Standard (1 M)用 990 µL PBS (pH 7.4)稀释至10 mM NaNO2 Standard储备液Ⅰ。取10 µL 10 mM 的NaNO2 Standard储备液Ⅰ用990 µL PBS (pH 7.4)稀释至100 µM NaNO2 Standard储备液Ⅱ。用100 µM Standard储备液Ⅱ按下表所示,进行下一步稀释:
注意:标准品现配现用;稀释后的标准溶液不稳定,必须在4小时内使用。
样本制备
1.动植物组织或细胞样本:称取约0.1 g组织样本或收集500万个细胞,加入1 mL PBS (pH 7.4),冰浴匀浆,14,000 rpm,4℃离心10 min,取上清液待测。
2.血浆,血清和尿液(和其他生物体液):直接将样品加入96孔板或微量玻璃比色皿。需要进行去蛋白的样品包括血清、血浆、全血、含有FBS的细胞培养基、组织或细胞裂解物。尿液和唾液不需要脱蛋白。
脱蛋白处理:将150 μL样品与8 μL ZnSO4混合在1.5 mL EP管中,旋涡,然后14,000 rpm,4℃离心10 min。将100 μL的上清液转移到干净的EP管中。
注意:建议您使用新鲜样品,如果不立即实验,样品可在-80℃保存一个月。如果样品需要脱蛋白,则每种标准品应制备150 μL,并同样用硫酸锌处理,避免结果计算中需要使用稀释因子。抗氧化剂和亲核剂(例如β-巯基乙醇、谷胱甘肽、二硫苏糖醇和半胱氨酸)可能会干扰检测。在样品制备过程中避免使用这些化合物。
实验步骤
1.酶标仪或可见光分光光度计预热30 min以上,调节波长到540 nm,可见光分光光度计用去离子水调零。
2.工作液的配制:每孔需要200 μL工作液,为避免损失,按204 µL每孔体系配制:吸取104 μL VCl3 Reagent,50 μL Griess Reagent Ⅰ和50 μL Griess ReagentⅡ。工作液需现配现用。
3.将100 μL稀释的标准品和样品添加到单独标记的EP管中(建议样品至少重复测量2次)。然后在每个样品和标准管中加入200 μL工作液,混合均匀。
4.将反应体系在37℃下孵育30 min。
5.对反应管进行短暂离心以去除不溶物,并将每个反应体系中分别取250 μL液体转移到96孔板或微量玻璃比色皿中。在540 nm处读取A值,分别标记为ABlank, AStandard和ASample。所有A值减去空白孔A值,计算ΔAStandard=AStandard-ABlank, ΔASample=ASample-ABlank。
注意:实验之前建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。如果样本A值>1.0,则说明样本NO含量太高,需用PBS(pH 7.4)适当稀释(计算公式中乘以相应稀释倍数)。如果样本的ΔASample低于0.005,可提高样本量。
结果计算
以标准液浓度为x轴,ΔAStandard为y轴,绘制标准曲线。将ΔASample带入方程得到x值(µM)即NO含量。
换算:1 mg/dL NO相当于333 μM,0.001%或10 ppm。
结果展示
典型标准曲线:以下数据和曲线仅供参考,实验者需根据自己的实验建立标准曲线。
Figure 1. 96孔板分析的NO标准曲线
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