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这种作者只提供了每组多个重复样本合并后数据的怎么办

差异表达分析:在数据预处理之后,可以进行差异表达分析,以识别在不同时间点或对照组之间表达显著变化的基因。可以使用如DESeq2、edgeR或limma等R包来进行分析。...这些工具能够处理重复样本,并考虑到生物学变异和测序技术变异。 数据可视化:为了更好地理解数据,可以进行主成分分析(PCA)或聚类分析,以可视化样本之间的相似性。...此外,热图可以用来展示差异表达基因的表达模式。 功能富集分析:对差异表达的基因进行功能富集分析,如GO分析或KEGG通路分析,可以帮助理解这些基因在生物学过程中的作用。...请注意,由于样本RNA进行了pooling,这可能会影响对单个样本之间差异的分析,因此在分析时需要特别注意这一点,并可能需要采用特定的统计方法来处理pooling的影响。...1],data.table = F)[,2] head(gid) # 批量读取并按照列合并 rpkm <- do.call(cbind, lapply(fs, function(x){

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剔除了两个样品前后的差异分析结果没什么区别?

并通过Affymetrix GeneChip HuGene 1.0 ST Arrays进行分析,以识别在这两种毛发类型中表达不同的基因。...'1'是按行取,'2'是按列取)取每一行的方差,从小到大排序,取最大的1000个 library(pheatmap) pheatmap(dat[cg,],show_colnames =F,show_rownames...= F) #对那些提取出来的1000个基因所在的每一行取出,组合起来为一个新的表达矩阵 n=t(scale(t(dat[cg,]))) # 'scale'可以对log-ratio数值进行归一化 n[n...,其实剔除了两个样品前后的差异分析结果没什么区别了,算是"不幸中的万幸"?...一致性评估:检查两组分析结果中DEGs的重叠程度,以及它们在生物学功能和通路中的一致性。可以使用Venn图来可视化两次分析结果的交集和差异 。

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    ​文章复现—bulkRNA转录组结合机器学习等进行相关疾病研究01—多数据集去除批次效应后联合分析以及火山图标准绘制

    duplicated(ids$symbol),] dat=dat[ids$probe_id,] #新的ids取出probe_id这一列,将dat按照取出的这一列中的每一行组成一个新的dat rownames...(dat)=ids$symbol#把ids的symbol这一列中的每一行给dat作为dat的行名 dat[1:4,1:4] #保留每个基因ID第一次出现的信息}save(gse_number,dat...duplicated(ids$symbol),] dat=dat[ids$probe_id,] #新的ids取出probe_id这一列,将dat按照取出的这一列中的每一行组成一个新的dat rownames...(dat)=ids$symbol#把ids的symbol这一列中的每一行给dat作为dat的行名 dat[1:4,1:4] #保留每个基因ID第一次出现的信息} save(gse_number,dat...duplicated(ids$symbol),] dat=dat[ids$probe_id,] #新的ids取出probe_id这一列,将dat按照取出的这一列中的每一行组成一个新的dat rownames

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    R语言学习笔记之——数据处理神器data.table

    rm(list=ls()) gc() 2、索引切片聚合 data.table中提供了将行索引、列切片、分组功能于一体的数据处理模型。...,无需加表明前缀,这一点儿数据框做不到,而且i,j,by三个参数对应的条件支持模糊识别,无论加“,”与否都可以返回正确结果。...data.table列索引 列索引与数据框相比操作体验差异比较大,data.table的列索引摒弃了data.frame时代的向量化参数,而使用list参数进行列索引。...以上语法加入了新的参数.SDcols和.SD,咋一看摸不着头脑,其实是在按照carrier,origin,dest三个维度分组的基础上,对每个子块特定列进行均值运算。...SD, mean)则将各个子块的对应列应用于均值运算,并返回最终的列表。

    3.6K80

    转录组测序结果分析

    1.和Gtex联合分析;2.不做T-N差异分析;3.从GEO数据库中找T-N的数据做差异分析,差异基因在TCGA里面继续分析。...###参数是一个数据框,对他的行名取子集,取出change列是UP的行名。###三个R包差异分析结果都有统一的change列,所以可以用相同的函数取子集。...###不出错的前提:行名是基因名,有change列,change列有UP的取值。###有了这个函数,提取上调基因的代码就变成UP(DEG1),起到简化代码的作用。...成一簇:说明画热图的基因在两个分组间有明显的表达模式;不成一簇:说明画热图的基因在两个分组间表达模式不是特别明显;换一组基因或者增删基因,可能改变聚类的结果。...b、如果取消聚类后没有各成一簇,说明表达矩阵的顺序是乱的。

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    分析GSEA通路中的上下调基因

    传统KEGG(通路富集分析)和GO(功能富集)分析时,如果富集到的同一通路下,既有上调差异基因,也有下调差异基因,那么这条通路总体的表现形式究竟是怎样?是被抑制还是激活?...排序之后的基因列表其顶部可看做是上调的差异基因,其底部是下调的差异基因。可用于判断某条通路在某组样本中是激活还是抑制!...,因此还需要从gtf注释文件中获取ensembl_id 、transcript_id与gene symbol的对应关系文件。...根据symbol列中的相同基因进行合并 counts <- aggregate(rawcount2, by=list(symbol), FUN=sum) View(counts) library(tibble...")) DEG_DESeq2 <- as.data.frame(tmp[order(tmp$padj),]) head(DEG_DESeq2) #去除差异分析结果中包含NA值的行 DEG_DESeq2

    1.6K30

    《高效R语言编程》5-高效输入输出

    在读取一行数据之前,应该先考虑下重复数据管理的通用规则,不改写原始数据。原始文件视为只读,保留原始文件名字并说明来源,是一个好办法。...:1)基础R的read.csv(),2)fread() 里data.table方法3)较新的readr包里read_csv()函数。...fread()与read_csv()的差异 readr与基础read_()一样,是基于前1000行而不是所有行来决定每个变量的类。...使用readr的话,会将违规数值转换成NA,而fread()会自动将它认为是数值的列转化成字符,fread()另一特征是可以使用列名或索引来设置select参数,从而有选择的读取列。...总的来说,三者在读入数据的差异超过了代码执行的时间,与基础R相比,其他两个的速度提升是一定程度的牺牲健壮性为代价的。

    1.6K20

    表达量芯片的代码当然是可以移植到转录组测序数据分析

    exprs这个函数 # dim(dat)#看一下dat这个矩阵的维度 # dat[1:4,1:4] #查看dat这个矩阵的1至4行和1至4列,逗号前为行,逗号后为列 # boxplot(dat...fread(fs[1],data.table = F) head(tmp) gid=fread(fs[1],data.table = F)[,1] head(gid) rawcount = do.call...评分范围:通常从0到4,分数越高表示肝纤维化的风险越高。 解释:BARD评分通常用于识别那些患有NASH并且存在较高肝纤维化风险的患者。...前面我们获取了非常详细的样品信息,文章是进行了4+3次差异分析,如下所示: 进行了4+3次差异分析 这些是可以使用我们的代码进行批量差异分析的: rm(list = ls()) ## 魔幻操作,一键清空...即使是抛开它这个无监督层次聚类的2分组不谈,它多次差异分析取交集来定位到25个基因,这样的操作也不可取,其实mfuzz或者wgcna更好,可以参考前面我们分享的代码:时间序列转录组多次差异分析以及时序分析

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    好强一个Julia!CSV数据读取,性能最高多出R、Python 22倍

    由于Pandas不支持多线程,因此报告中的所有数据均为单线程的速度。 浮点型数据集 第一个数据集包含以1000k行和20列排列的浮点值。 ? Pandas需要232毫秒来加载此文件。...单线程CSV.jl是没有多线程的Pandas(Python)的1.5倍,而多线程的CSV.jl可以达到11倍。 字符串数据集 I 此数据集在且具有1000k行和20列,并且所有列中不存在缺失值。 ?...单线程中,CSV.jl比R快2倍,而使用10个线程则快了10倍。 按揭贷款风险数据集 从Kaggle取得的按揭贷款风险数据集是一种混合型的数据集,具有356k行和2190列。...房利美收购数据集 从房利美网站上下载的数据集,有4000k行和25列,数据类型为:Int、String、Float,Missing。 ? 单线程data.table比CSV.jl快1.25倍。...我知道Julia和Python之间存在一些互操作性,但是很多东西是无法互操作的,并且数组索引等方面存在令人讨厌的差异。 人们为什么不能仅仅依靠某种技术,使其成熟并享受越来越高的功能?

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    是否高表达还不是你说了算

    :4,1:4] #查看dat这个矩阵的1至4行和1至4列,逗号前为行,逗号后为列 boxplot(dat['207545_s_at',] ~ group_list) boxplot(dat...FC 反映了基因表达变化的幅度,是一个直观的度量,可以帮助研究者快速识别表达变化显著的基因。...P值: P值是统计学中用于衡量观察到的数据与零假设(通常是没有差异或没有效应)之间差异的显著性的概率度量。...P值越小,表示观察到的数据与零假设之间的差异越不可能是偶然发生的,即基因表达的差异越可能是真实的。...在评估基因表达差异的重要性时,需要考虑多个因素: 生物学背景: 某些生物学过程或信号通路中的关键基因可能不会表现出大的变化倍数,但即使是微小的表达变化也可能具有重要的生物学意义。

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    两个不同数据集:同一课题组同样的实验设计差异分析结果一致性却很差是为什么呢?

    相应的肿瘤标本经福尔马林固定并包埋于石蜡中,用于组织学检查;其他标本则用于RNA提取。当相应的标本中至少含有70%的肿瘤细胞时(如参考文献9所述;见补充图S1),则使用这些标本进行RNA提取。...标本在液氮中迅速冷冻,并在-80℃下保存,直至使用。所有患者接受了总计50.4Gy的放疗剂量,并在放疗结束后4周进行了标准化的根治性切除术。...exprs这个函数 dim(dat) # 看一下dat这个矩阵的维度 dat[1:4,1:4] # 查看dat这个矩阵的1至4行和1至4列,逗号前为行,逗号后为列 ## ~~~查看数据是否需要...两个数据除了芯片平台不一致,其他的基本上都相同,我们来问问人工智能大模型看看能不能给我们一个合理的答案: 问:两个GEO芯片数据除了芯片平台不一致,实验设计一模一样,但是差异分析结果一致性却很差,可能的原因是什么呢...批次效应(Batch Effect) 批次效应是指在实验过程中引入的非生物学的技术或实验变异,可能源自实验的不同运行批次、不同的实验人员、仪器的不同或者实验条件的变化等。

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    最常见的MySQL面试题

    二、优化策略回答:根据识别出的瓶颈,我会采取以下优化策略:索引优化:确保查询中频繁使用的列上有合适的索引。对于多列组合查询,考虑创建复合索引,注意索引列的顺序应与查询条件中的列顺序一致。...如果指定列中存在NULL值,则这些行不会被计入统计结果。count(*):统计的是所有行的数量,包括所有列都为NULL的行。它实际上是统计表的行数,不考虑任何列的值是否为NULL。...三、性能差异回答:在性能上,count(列名)和count(*)之间可能存在一些差异,但这些差异通常取决于具体的数据库实现和表的特性。...然而,在实际应用中,这种情况很少见。对于count(*),由于它统计的是所有行的数量,因此通常不会利用特定的列索引。执行计划:在大多数情况下,count(*)和count(列名)的执行计划是相似的。...同时,我们也不应该过分关注它们之间的微小性能差异,而应该更加注重查询的语义正确性和可读性。

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    转录组GSE157718_Tpm与Count差异分析的比较

    转录组GSE157718_Tpm与Count差异分析的比较在尝试复现GSE157718数据集的时候,发现网站同时提供了表达矩阵tpm形式与count形式,因此分别用这两种形式进行基因差异与富集分析,再进行对比...注:有count矩阵就用count矩阵1 Count形式以count给出的表达矩阵是我们最为熟悉的形式,这里只稍加记录下数据整理的代码,具体的差异富集分析,与其他的流程并无不同。...1 以fread函数导入的数据形式为data.table,设置行名很麻烦,这里先转化为data.frame形式2 行名或(GeneID列)为ENTREZID,需要转化为SYMBOL3 归根结底是表达矩阵的形式需要行名为基因名...,最好再去交集进行富集分析的结果如下2 Tpm形式Tpm也可以勉强进行差异分析,但是只能取log后,用limma做差异分析fpkm、rpkm需先转换为Tpm形式,用limma做差异分析limma差异分析参考基于芯片的分析流程表达矩阵...,这里的Tpm logFC的阈值为1(设置为2的话分析出来的差异基因只有30左右),同Count 的logFC的阈值为2相比,富集的通路类型反而少了很多。

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